Kurztitel

Kosmetik – Analysenverordnung

Kundmachungsorgan

BGBl. Nr. 95/1995Bundesgesetzblatt Nr. 95 aus 1995,

Typ

Vrömisch fünf

§/Artikel/AnlageParagraph/Artikel/Anlage

Anl. 19Anlage 19

Inkrafttretensdatum

01.03.1995

Index

82/05 Lebensmittelrecht

Text

Anlage 19 NACHWEIS UND QUANTITATIVE BESTIMMUNG VON HEXACHLOROPHEN

A. IDENTIFIZIERUNG

1. 1.Ziffer eins
   ZWECK UND ANWENDUNGSBEREICH

   Dieses Verfahren ist für alle kosmetischen Mittel anwendbar.
2. 2.Ziffer 2
   PRINZIP

   Hexachlorophen in der Probe wird mit Ethylacetat extrahiert und durch Dünnschichtchromatographie nachgewiesen.
3. 3.Ziffer 3
   REAGENZIEN

   Alle Reagenzien müssen analysenrein sein.
4. 3.1.3 Punkt eins
   Schwefelsäure 4 M.
5. 3.2.3 Punkt 2
   Celite AW.
6. 3.3.3 Punkt 3
   Ethylacetat.
7. 3.4.3 Punkt 4
   Fließmittel:

   Benzol mit 1 % v/v Eisessig.
8. 3.5.3 Punkt 5
   Sprühmittel 1:

   Rhodamin-B-Lösung: 100 mg Rhodamin B werden in einer Mischung von 150 ml Diethylether, 70 ml absolutem Ethanol und 16 ml Wasser gelöst.
9. 3.6.3 Punkt 6
   Sprühmittel 2:

   2,6-Dibrom-4-(chlorimino)cyclohexa-2,5-dienonlösung: 400 mg 2,6-Dibrom-4(chlorimino)cyclohexa-2,5-dienon in 100 ml Methanol lösen (täglich neu zubereiten) Natriumkarbonatlösung: 10 g Natriumkarbonat in 100 ml entmineralisiertem Wasser lösen.
10. 3.7.3 Punkt 7
    Referenzlösung:

    0,05 % m/v Lösung von Hexachlorophen in Ethylacetat (3.3).
11. 4.Ziffer 4
    GERÄTE
12. 4.1.4 Punkt eins
    DC-Fertigplatten Kieselgel F254, 20 x 20 cm.
13. 4.2.4 Punkt 2
    Übliches Gerät für Dünnschichtchromatographie.
14. 4.3.4 Punkt 3
    Auf 26 °C temperierbares Bad.
15. 5.Ziffer 5
    VORBEREITUNG DER PROBE
16. 5.1.5 Punkt eins
    1 g der homogenisierten Probe mit 1 g Celite AW (3.2) und 1 ml Schwefelsäure (3.1) gründlich mischen.
17. 5.2.5 Punkt 2
    Zwei Stunden lang bei 100 °C trocknen lassen.
18. 5.3.5 Punkt 3
    Abkühlen lassen und getrockneten Rückstand fein pulverisieren.
19. 5.4.5 Punkt 4
    Zweimal mit jeweils 10 ml Ethylacetat (3.3) extrahieren, nach jeder Extraktion zentrifugieren und die Ethylacetatschichten vereinigen.
20. 5.5.5 Punkt 5
    Bei 60 °C eindampfen lassen.
21. 5.6.5 Punkt 6
    Den Rückstand in 2 ml Ethylacetat lösen.
22. 6.Ziffer 6
    VERFAHREN
23. 6.1.6 Punkt eins
    2 l der Probelösung (5.6) und 2 l der Referenzlösung (3.7) auf eine DC-Platte (4.1) auftragen.
24. 6.2.6 Punkt 2
    Das auf 26 °C temperierte Chromatographiegefäß mit dem Fließmittel (3.4) sättigen.
25. 6.3.6 Punkt 3
    Die DC-Platte in das Gefäß stellen und bis zu einer Höhe von 15 cm entwickeln lassen.
26. 6.4.6 Punkt 4
    Die DC-Platte entnehmen und im Trockenschrank bei 105 °C trocknen lassen.
27. 6.5.6 Punkt 5
    Entwicklung:

    Hexachlorophenflecken nach 6.5.1 oder 6.5.2 sichtbar machen.
28. 6.5.1.6 Punkt 5 Punkt eins
    Sprühmittel 1 (3.5) gleichmäßig auf die Platte sprühen. Nach 30 Minuten Platte unter UV-Licht (254 nm) betrachten.
29. 6.5.2.6 Punkt 5 Punkt 2
    Sprühmittel 2 (3.6):

    Die Platte gleichmäßig mit der 2,6-Dibrom-4-(chlorimino)cyclohexa-2,5-dienonlösung des Sprühmittels 2 (3.6) besprühen. Anschließend mit Natriumkarbonatlösung (3.6) sprühen. Platte nach 10minütiger Trocknung bei Raumtemperatur im Tageslicht betrachten.
30. 7.Ziffer 7
    AUSWERTUNG DER ERGEBNISSE
31. 7.1.7 Punkt eins
    Sprühmittel 1 (3.5):

    Hexachlorophen erscheint als bläulicher Fleck auf einem gelb-orange fluoreszierenden Hintergrund, es hat einen Rf-Wert von etwa 0,5.
32. 7.2.7 Punkt 2
    Sprühmittel 2 (3.6):

    Hexachlorophen erscheint als türkisfarbener Fleck auf weißem Grund mit einem Rf-Wert von etwa 0,5.

B. QUANTITATIVE BESTIMMUNG

1. 1.Ziffer eins
   ZWECK UND ANWENDUNGSBEREICH

   Dieses Verfahren ist für alle kosmetischen Mittel anwendbar.
2. 2.Ziffer 2
   DEFINITION

   Der nach dieser Methode bestimmte Gehalt der Probe an Hexachlorophen wird in Massenprozent (m/m) ausgedrückt.
3. 3.Ziffer 3
   PRINZIP

   Hexachlorophen wird nach Umwandlung in das Methylderivat gaschromatographisch mit einem Elektroneneinfangdetektor bestimmt. Bei diesem Verfahren wird ein interner Standard verwendet.
4. 4.Ziffer 4
   REAGENZIEN

   Alle Reagenzien müssen analysenrein sein.
5. 4.1.4 Punkt eins
   Ethylacetat.
6. 4.2.4 Punkt 2
   N-Methyl-N-nitroso-p-toluolsulfonamid (Diazald).
7. 4.3.4 Punkt 3
   Diethylether.
8. 4.4.4 Punkt 4
   Methanol.
9. 4.5.4 Punkt 5
   2-(2-Ethoxyethoxy)ethanol (Carbitol).
10. 4.6.4 Punkt 6
    Ameisensäure.
11. 4.7.4 Punkt 7
    Kaliumhydroxid – wässerige Lösung 50% m/m, unmittelbar vor Gebrauch zubereiten.
12. 4.8.4 Punkt 8
    Hexan zur Spektroskopie.
13. 4.9.4 Punkt 9
    Bromchlorophen (Standard Nr. 1).
14. 4.10.4 Punkt 10
    4,4',6,6'-Tetrachlor-2,2'-thiodiphenol (Standard Nr. 2).
15. 4.11.4 Punkt 11
    2,4,4'-Trichlor-2-hydroxy-diphenylether (Standard Nr. 3).
16. 4.12.4 Punkt 12
    Aceton.
17. 4.13.4 Punkt 13
    Schwefelsäure 4M.
18. 4.14.4 Punkt 14
    Celite AW.
19. 4.15.4 Punkt 15
    Ameisensäure-Ethylacetatlösung 10 % v/v.
20. 4.16.4 Punkt 16
    Hexachlorophen.
21. 5.Ziffer 5
    GERÄTE
22. 5.1.5 Punkt eins
    Übliche Laborgeräte.
23. 5.2.5 Punkt 2
    Apparatur für die Herstellung von Diazomethan – Millimole Size – (vgl. Anal. Chem. 45, 2302 – 3, 1973).Apparatur für die Herstellung von Diazomethan – Millimole Size – vergleiche Anal. Chem. 45, 2302 – 3, 1973).
24. 5.3.5 Punkt 3
    Gaschromatograph mit 63Ni-Elektroneneinfangdetektor.
25. 6.Ziffer 6
    VERFAHREN
26. 6.1.6 Punkt eins
    Zubereitung von Standardlösungen

    Der Standard ist so zu wählen, daß es durch keinen in dem zu analysierenden Produkt enthaltenen Stoff gestört wird. Standard Nr. 1 ist normalerweise am besten geeignet.
27. 6.1.1.6 Punkt eins Punkt eins
    Etwa 50 mg des Standards Nr. 1 (4.9), 2 (4.10) oder 3 (4.11.) und 50 mg Hexachlorophen (4.16) genau wägen und in einen 100-ml-Meßkolben geben. Mit Ethylacetat auffüllen (Lösung A). 10 ml der Lösung A mit Ethylacetat auf 100 ml verdünnen (Lösung B).
28. 6.1.2.6 Punkt eins Punkt 2
    Etwa 50 mg des Standards Nr. 1 (4.9), 2 (4.10) oder 3 (4.11) genau wägen und in einen 100-ml-Meßkolben geben. Mit Ethylacetat auffüllen (Lösung C).
29. 6.2.6 Punkt 2
    Zubereitung der Probe (1)

    1 g der homogenisierten Probe wird genau gewogen und gründlich mit 1 ml Schwefelsäure (4.13), 15 ml Aceton (4.12) und 8 g Celite AW (4.14) gemischt. Die Mischung wird 30 Minuten lang auf dem Dampfbad luftgetrocknet, anschließend 1 ½ Stunden in einem Umluft-Trockenschrank getrocknet. Abkühlen, den Rückstand zu Pulver fein zerreiben und in eine Glassäule überführen. Mit Ethylacetat eluieren und 100 ml auffangen. 2 ml der internen Standardlösung (6.1.2) hinzufügen.
30. 6.3.6 Punkt 3
    Methylierung der Probe

    Alle Reagenzien und Geräte zwei Stunden lang auf eine Temperatur zwischen 0 °C und 4 °C kühlen. In den Außenteil der Diazomethanapparatur (5.2) 1,2 ml der nach 6.2 erhaltenen Lösung und 0,1 ml Methanol (4.4) füllen.

    Etwa 200 mg Diazald (4.2) in den mittleren Behälter füllen, 1 ml Carbitol (4.5) und 1 ml Diethylether (4.3) hinzufügen und lösen. Die Apparatur zusammensetzen, halb in ein Bad von 0 °C tauchen und mit einer Spritze etwa 1 ml der gekühlten Kaliumhydroxidlösung (4.7) in den zentralen Behälter einführen.

    Durch Bildung von Diazomethan färbt sich die Lösung gelb; die Gelbfärbung muß beständig sein. Hält sich die gelbe Farbe nicht, so wird der Methylierungsvorgang mit weiteren 200 mg Diazald (4.2) wiederholt (2).

    Nach 15 Minuten die Apparatur aus dem Bad nehmen und bei Raumtemperatur zwölf Stunden lang geschlossen stehen lassen. Dann die Apparatur öffnen, das überschüssige Diazomethan durch Hinzufügen weniger Tropfen einer 10 % v/v Lösung von Ameisensäure in Ethylacetat (4.15) entfernen und die organische Lösung in einen 25-ml-Meßkolben bringen. Mit Hexan (4.8) auffüllen.

    1,5 l dieser Lösung in den Chromatographen einspritzen.
31. 6.4.6 Punkt 4
    Methylierung der Standardlösung

    Alle Reagenzien und Geräte werden zwei Stunden lang auf 0 °C bis 4 °C gekühlt. In den äußeren Teil der Diazomethanapparatur werden eingefüllt:

    0,2 ml Lösung B (6.1.1),

    1,0 ml Ethylacetat (4.1),

    0,1 ml Methanol (4.4).

    Den Methylierungsvorgang wie in 6.3 beschrieben fortsetzen. 1,5 l der resultierenden Lösung in den Chromatographen einspritzen.
32. 7.Ziffer 7
    GASCHROMATOGRAPHIEBEDINGUNGEN

    Die stationäre Phase muß ein Auflösungsvermögen R vonmindestens 1,5 ergeben.

1. 8.Ziffer 8
   BERECHNUNG
2. 8.1.8 Punkt eins
   Proportionalitätskoeffizient von Hexachlorophen

   Dieser Koeffizient wird entsprechend dem gewählten Standard im Verhältnis zur Standardmischung berechnet.

   Dabei ist:

1. 8.2.8 Punkt 2
   Gehalt von Hexachlorophen in der Probe

1. 9.Ziffer 9
   WIEDERHOLBARKEIT (3)

   Bei einem Hexachlorophengehalt von 0,1 % (m/m) darf die Differenz zwischen zwei an der gleichen Probe durchgeführten Parallelbestimmungen 0,005% nicht überschreiten.

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(1) Da Hexachlorophen in den verschiedensten Erzeugnissen vorhanden sein kann, muß zuerst die Wiederfindung von Hexachlorophen in der Probe mit diesem Verfahren ermittelt werden, bevor Ergebnisse festgehalten werden. Wird nur eine geringe Wiederfindung ermittelt, so können Änderungen, wie andere Lösungsmittel (Benzol anstelle von Ethylacetat) usw. mit Zustimmung der beteiligten Partner vorgenommen werden.

(2) Die Fortdauer der Gelbfärbung weist auf einen Überschuß an Diazomethan hin, der für eine vollständige Methylierung der Probe notwendig ist.

(3) Siehe ISO-Norm 5725.

Zuletzt aktualisiert am

09.05.2017

Gesetzesnummer

10010899

Dokumentnummer

NOR12138663

alte Dokumentnummer

N8199547970J